Везде

ОБНГенетика Russian Journal of Genetics

  • ISSN (Print) 0016-6758
  • ISSN (Online) 3034-5103

ПОЛИМОРФИЗМ ГЕНОВ, КОДИРУЮЩИХ СЕЛЕНОПРОТЕИНЫ, У КОРЕННОГО НАСЕЛЕНИЯ СИБИРИ: АДАПТИВНЫЙ ВАРИАНТ rs1133238-A ГЕНА

Вы можете
Код статьи
S3034510325100091-1
DOI
10.7868/S3034510325100091
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Малярчук Б.А.
  • Аффилиация: Институт биологических проблем Севера Дальневосточного отделения Российской академии наук
Похилюк Н.В.
  • Аффилиация: Институт биологических проблем Севера Дальневосточного отделения Российской академии наук
Литвинов А.Н.
  • Аффилиация: Институт биологических проблем Севера Дальневосточного отделения Российской академии наук
Том/ Выпуск
Том 61 / Номер выпуска 10
Страницы
108-124
Аннотация
В настоящей работе проведен анализ распределения вариантов полиморфизма 25 генов, кодирующих селенопротеины, в популяциях коренного населения Сибири, основываясь на данных об изменчивости экзонов и прилегающих к ним некодирующих последовательностей ДНК. Исследование показало, что у коренного населения Сибири практически отсутствуют варианты полиморфизма, резко отличающиеся по частоте от таковых у населения Восточной Азии, что могло бы свидетельствовать о действии отбора на гены, кодирующие селенопротеины. Тем не менее нами предложены наборы локусов в экзонах (rs3732532 гена , rs1050450 гена , rs6748996 гена , rs225014 гена ) и некодирующей области генов (rs2291250 гена , rs201938903 гена , rs11258324 гена ), дальнейшее исследование полиморфизма которых в различных этнических группах Сибири вполне целесообразно. Наиболее перспективным локусом является rs1133238 гена . Обнаружено, что на северо-востоке Сибири частота варианта rs1133238-A превышает 30%, хотя в других регионах Сибири его частота заметно ниже (~12%). Учитывая выявленную ранее у канадских эскимосов ассоциацию между вариантом rs1133238-A и содержанием ртути в крови, предполагается, что увеличение частоты варианта rs1133238-A в популяциях прибрежных районов Северо-Восточной Сибири (у коряков, чукчей, эскимосов) может быть обусловлено протективной ролью этого аллеля от воздействия соединений ртути на организм.
Ключевые слова
селенопротеины ген SEPHS2 локус rs1133238 популяции человека Сибирь адаптивные изменения генома
Дата публикации
01.10.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
30

Библиография

  1. 1. Миних В.Б. Базовые аспекты метаболизма селена и биосинтез селенопротеинов в организме человека // Усп. биол. химии. 2022. Т. 62. С. 369–390.
  2. 2. Ferreira R.R., Carvalho R.V., Coelho L.L. et al. Current understanding of human polymorphism in selenoprotein genes: A review of its significance as a risk biomarker // Int. J. Mol. Sci. 2024. V. 25. P. 1402. https://doi.org/10.3390/ijms25031402
  3. 3. Köhrle J. The trace element selenium and the thyroid gland // Biochimie. 1999. V. 81. P. 527–533. https://doi.org/10.1016/s0300-9084 (99)80105-9
  4. 4. Köhrle J. Selenium, iodine and iron-essential trace elements for thyroid hormone synthesis and metabolism // Int. J. Mol. Sci. 2023. V. 24. https://doi.org/10.3390/ijms24043393
  5. 5. Parajuli R.P., Goodrich J.M., Chan L.H.M. et al. Genetic polymorphisms are associated with exposure biomarkers for metals and persistent organic pollutants among Inuit from the Inuvialuit Settlement Region, Canada // Sci. Total Environ. 2018. V. 634. P. 569–578. https://doi.org/10.1016/j.scitotenv.2018.03.331
  6. 6. Yao Y., Pei F., Kang P. Selenium, iodine, and the relation with Kashin-Beck disease // Nutrition. 2011. V. 27. P. 1095–1100. https://doi.org/10.1016/j.nut.2011.03.002
  7. 7. White L., Romagne F., Muller E. et al. Genetic adaptation to levels of dietary selenium in recent human history // Mol. Biol. Evol. 2015. V. 32. P. 1507–1518. https://doi.org/10.1093/molbev/msv043
  8. 8. Cornelis M.C., Fornage M., Foy M. et al. Genome-wide association study of selenium concentrations // Hum. Mol. Genet. 2015. V. 24. P. 1469–1477. https://doi.org/10.1093/hmg/ddu546
  9. 9. Aganyy O., Ben Zeev B., Lev D. et al. Mutations disrupting selenocysteine formation cause progressive cerebello-cerebral atrophy // Am. J. Hum. Genet. 2010. V. 87. P. 538–544. https://doi.org/10.1016/j.ajhg.2010.09.007
  10. 10. Affthan G., Xu G.L., Tan W.H. et al. Selenium supplementation of children in a selenium-deficient area in China: Blood selenium levels and glutathione peroxidase activities // Biol. Trace Elem. Res. 2000. V. 73. P. 113–125. https://doi.org/10.1385/BTER:73:2:113
  11. 11. Xiong Y.M., Zou X.Z., Chen Q. et al. Relationship between Gpx1 Pro198leu polymorphism and susceptibility of Kashin-Beck disease // Value Health. 2015. V. 18. P. A638. https://doi.org/10.1016/j.jval.2015.09.2270
  12. 12. Yu F.F., Sun L., Zhou G.Y. et al. Meta-analysis of association studies of selenoprotein gene polymorphism and Kashin-Beck disease: An updated systematic review // Biol. Trace Elem. Res. 2022. V. 200(2). P. 543–550. https://doi.org/10.1007/s12011-021-02705-2
  13. 13. Голубкина Н.А., Папазян Т.Т. Селен в питании. Растения, животные, человек. М.: «Печатный город», 2006. 250 с.
  14. 14. Синдирева А.В., Эрдэнэцогт Э., Голубкина Н.А., Гурьев Н.Е. Интегральный подход к нормированию действия селена в системе почва–растение–животное для разработки научно-обоснованной профилактики микроэлементозов в регионах России и Монголии. Омск: Издательский центр КАН, 2024. 244 с.
  15. 15. Побилат А.Е., Волошин Е.И. Особенности содержания селена в системе почва–растение (обзор) // Вестник КрасГАУ. 2020. № 11. С. 98–105. https://doi.org/10.36718/1819-4036-2020-11-98-105
  16. 16. Зорина Д.Ю., Бацевич В.А. Микроэлементный статус коренного населения Арктики (чукчи и эскимосы) по результатам анализа волос // Вестник Москов. ун-та. Серия 23. Антропология. 2011. № 4. С. 105–111.
  17. 17. Little M., Achouba A., Ayotte P., Lemire M. Emerging evidence on selenoneine and its public health relevance in coastal populations: A review and case study of dietary Se among Inuit populations in the Canadian Arctic // Nutr. Res. Rev. 2024. V. 37. P. 1–10. https://doi.org/10.1017/S0954422424000039
  18. 18. Achouba A., Dumas P., Ouellet N. et al. Selenoneine is a major selenium species in beluga skin and red blood cells of Inuit from Nunavik // Chemosphere. 2019. V. 229. P. 549–558. https://doi.org/10.1016/j.chemosphere.2019.04.191
  19. 19. Foster C.B., Aswath K., Chanock S.J. et al. Polymorphism analysis of six selenoprotein genes: Support for a selective sweep at the glutathione peroxidase 1 locus (3p21) in Asian populations // BMC Genet. 2006. V. 7. https://doi.org/10.1186/1471-2156-7-56
  20. 20. Engelken J., Espadas G., Mancuso F.M. et al. Signatures of evolutionary adaptation in quantitative trait loci influencing trace element homeostasis in liver // Mol. Biol. Evol. 2016. V. 33. P. 738–754. https://doi.org/10.1093/molbev/msv267
  21. 21. Kumar L., Chowdhari A., Sequeira J.J. et al. Genetic affinities and adaptation of the South-West coast populations of India // Genome Biol. Evol. 2023. V. 15. https://doi.org/10.1093/gbe/ewad225
  22. 22. Santesmasse D., Gladyshev V.V. Pathogenic variants in selenoproteins and selenocysteine biosynthesis machinery // Int. J. Mol. Sci. 2021. V. 22. https://doi: 10.3390/ijms222111593
  23. 23. Cardona A., Pagani L., Antao T. et al. Genome-wide analysis of cold adaption in indigenous Siberian populations // PLoS One. 2014. V. 9. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0098076
  24. 24. Hallmark B., Karafet T.M., Hsieh P. et al. Genomic evidence of local adaptation to climate and diet in indigenous Siberians // Mol. Biol. Evol. 2019. V. 36. P. 315–327. https://doi.org/10.1093/molbev/msy211
  25. 25. Kolesnikov N.A., Kharkov V.N., Zarubin A.A. et al. Signals of directed selection in the indigenous populations of Siberia // Russ. J. Genet. 2022. V. 58. P. 473–477. https://doi.org/10.1134/S102279542204007X
  26. 26. Ермаков В.В. Концепция биогеохимических провинций А.П. Виноградова и ее развитие // Геохимия. 2017. № 10. С. 875–890. DOI: 10.7868/S0016752517100041
  27. 27. Pagani L., Lawson D.J., Jagoda E. et al. Genomic analyses inform on migration events during the peopling of Eurasia // Nature. 2016. V. 538. P. 238–242. https://doi.org/10.1038/nature19792
  28. 28. Bang J., Kang D., Jung J. et al. SEPHS1: Its evolution, function and roles in development and diseases // Arch. Biochem. Biophys. 2022. V. 730. https://doi.org/10.1016/j.abb.2022.109426
  29. 29. Excoffier L., Lischer H.E.L. Arlequin suite ver. 3.5: A new series of programs to perform population genetics analyses under Linux and Windows // Mol. Ecol. Resour. 2010. V. 10. P. 564–567. https://doi.org/10.1111/j.1755-0998.2010.02847.x
  30. 30. Watterson G.A. The homozygosity test after a change in population size // Genetics. 1986. V. 112. P. 899–907. https://doi.org/10.1093/genetics/112.4.899
  31. 31. Slatkin M. A correction to the exact test based on the Ewens sampling distribution. Genet. Res. 1996. V. 68. P. 259–260. https://doi.org/10.1017/s0016672300034236
  32. 32. Yi X., Liang Y., Huerta-Sanchez E. et al. Sequencing of 50 human exomes reveals adaptation to high altitude // Science. 2010. V. 329. P. 75–78. https://doi.org/10.1126/science.1190371
  33. 33. Fumagalli M., Moltke I., Grarup N. et al. Greenlandic Inuit show genetic signatures of diet and climate adaptation // Science. 2015. V. 349. P. 1343–1347. https://doi.org/10.1126/science.aab2319
  34. 34. Takata Y., King I.B., Lampe J.W. et al. Genetic variation in GPX1 is associated with GPX1 activity in a comprehensive analysis of genetic variations in selenoenzyme genes and their activity and oxidative stress in humans // J. Nutr. 2012. V. 142. P. 419–426. https://doi.org/10.3945/jn.111.151845
  35. 35. Jablonska E., Gromadzinska J., Peplonska B. et al. Lipid peroxidation and glutathione peroxidase activity relationship in breast cancer depends on functional polymorphism of GPX1 // BMC Cancer. 2015. V. 15. P. 657. https://doi.org/10.1186/s12885-015-1680-4
  36. 36. Chan P.H.Y., Chan K.Y.Y., Schooling C.M. et al. Association between genetic variations in GSH-related and MT genes and low-dose methylmercury exposure in children and women of childbearing age: A pilot study // Environ. Res. 2020. V. 187. https://doi.org/10.1016/j.envres.2020.109703
  37. 37. Kwon J.W., Shin E.S., Lee J.E. et al. Genetic variations in TXNRD1 as potential predictors of drug-induced liver injury // Allergy Asthma Immunol. Res. 2012. V. 4. P. 132–136. https://doi.org/10.4168/aair.2012.4.3.132
  38. 38. Adlard B., Bonefeld-Jørgensen E.C., Dudarev A.A. et al. Levels and trends of metals in human populations living in the Arctic // Int. J. Circumpolar Health. 2024. V. 83. https://doi.org/10.1080/22423982.2024.2386140
  39. 39. Dudarev A.A., Chupakhin V.S., Vlasov S.V. et al. Traditional diet and environmental contaminants in coastal Chukotka III: Metals // Int. J. Environ. Res. Public Health. 2019. V. 16. https://doi.org/10.3390/ijerph16050699
  40. 40. Ikemoto T., Kunito T., Tanaka H. et al. Detoxification mechanism of heavy metals in marine mammals and seabirds: Interaction of selenium with mercury, silver, copper, zinc, and cadmium in liver // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 2004. V. 47. P. 402–413. https://doi.org/10.1007/s00244-004-3188-9
  41. 41. Rupa S.A., Patwary M.A.M., Matin M.M. et al. Interaction of mercury species with proteins: Towards possible mechanism of mercurial toxicology // Toxicol. Res. 2023. V. 12. P. 355–368. https://doi.org/10.1093/toxres/ftad039
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека